[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: درباره نشريه :: آخرين شماره :: تمام شماره‌ها :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
:: دوره 22، شماره 1 - ( بهار 1399 ) ::
جلد 22 شماره 1 صفحات 32-49 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر تنش شوری بر ویژگی‌های فیزیولوژیکی و پروفایل پروتئینی ارقام متحمل و حساس جو (.Hordeum vulgare L) در مرحله رشد رویشی
معروف خلیلی، محمدرضا نقوی
دانشیار بخش کشاورزی، دانشگاه پیام نور، ایران
چکیده:   (43 مشاهده)

 به منظور بررسی ویژگی­های مرتبط با تحمل تنش در ارقام متحمل (افضل) و حساس (ماکویی) جو در شرایط تنش شوری
(250 میلی مولار کلرید سدیم)، آزمایشی به­صورت فاکتوریل بر پایه طرح کاملاً تصادفی در سال 1397 در دانشگاه پیام نور مهاباد انجام شد. تنش شوری از مرحله پنجه‌زنی آغاز شده و نمونه­های برگی در صفر، 3، 6 و 9 روز پس از اعمال تنش برداشت شدند. نتایج نشان داد که تنش شوری علاوه بر اثر منفی بر ویژگی­های مورفولوژیکی و فیزیولوژیکی از قبیل روابط آبی سلول و فتوسنتز گیاه، باعث افزایش غلظت یون سدیم، کاهش غلظت یون پتاسیم، اختلال در تعادل یونی و کاهش نسبت پتاسیم به سدیم در سلول شد. در شرایط تنش شوری، میزان نشت الکترولیتی، پرولین و گلایسین بتائین در ارقام جو بیشتر از شرایط بدون تنش بودند. بیشترین
کاهش در ویژگی­های مورد ارزیابی در نمونه‌های روز نهم پس از اعمال تنش مشاهده شد و از این نظر، رقم ماکویی نسبت به رقم افضل افت بیشتری داشت. نتایج تجزیه پروتئوم نشان داد که در شرایط تنش شوری هفت لکه پروتئینی بین دو رقم جو مورد ارزیابی مشترک بودند. نتایج طیف­سنجی جرمی نشان داد که اکثر پروتئین­های شناسایی شده در دفاع آنتی­اکسیدانی نقش داشته
و بعنوان مهم‌ترین پروتئین­های مشترک در دو رقم جو در همئوستازی سلولی مشارکت داشتند. بر اساس نتایج این آزمایش، به
 نظر می‌رسد که بیان کمتر پروتئین­های مشترک در رقم حساس نسبت به رقم متحمل جو، علت واکنش ضعیف‌تر این رقم در شرایط تنش شوری باشد.
واژه‌های کلیدی: تجمع مواد محلول آلی، تنش شوری، جو، روابط آبی و نشت الکترولیتی.
متن کامل [PDF 1173 kb]   (19 دریافت)    
نوع مطالعه: علمی - پژوهشي | موضوع مقاله: تخصصي
دریافت: ۱۳۹۸/۱/۲۲ | پذیرش: ۱۳۹۹/۲/۳۰ | انتشار: ۱۳۹۹/۲/۳۰
فهرست منابع
1. Arias, D. 2007. Calibration of LAI-2000 to estimate leaf area index and assessment of its relationship with stand productivity in six native and introduced tree species in Costarica. Forest Ecol. Manag. 247: 185-193. [DOI:10.1016/j.foreco.2007.04.039]
2. Baker, N. R. and E. Rosenquist. 2004. Application of chlorophyll fluorescence can improve crop production strategies: An examination of future possibilities. J. Exp. Bot. 55: 1607-1627. [DOI:10.1093/jxb/erh196]
3. Bates, L. S., R. D. Walderen and L. D. Taere. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant Soil. 39: 205-207. [DOI:10.1007/BF00018060]
4. Bhardway, R. and G. Singhal. 1981. Effect of water stress on photochemical activity of chloroplasts during greening etiolated barley seedlings. Plant Cell Physiol. 22 (2): 155-162.
5. Damerval, C., D. De Vienne, M. Zivy and H. Thiellement. 1986. Technical improvements in two-dimensional electrophoresis increase the level of genetic variation detected in wheat-seedling roteins. Electrophoresis. 7: 52-54. [DOI:10.1002/elps.1150070108]
6. Emami, Y., E. Hosseini, N. Rafiei and H. Pirasteh anousheh. 2013. Reaction of the initial growth and concentrations of sodium and potassium ions in ten cultivars (Hordeum vulgare L.) under salinity stress conditions. J. Crop Physiol. 5 (19): 5-15 (in Persian with English abstract).
7. FAO. 2017. http://faostat3.fao.org/download/Q/QC/E.
8. Grieve, C. M. and S. R. Grattan. 1983. Rapid assay for determination of water soluble quaternary ammonium compounds. Plant Soil. 70: 303-307. [DOI:10.1007/BF02374789]
9. Guo, G., P. Ge, C. Ma, X. Li, D. Lv, S. Wang, W. Ma and Y. Yan. 2012. Comparative proteomic analysis of salt response proteins in seedling roots of two wheat varieties. J. Proteomics. 75: 1867-1885. [DOI:10.1016/j.jprot.2011.12.032]
10. Herbert, B. 1999. Advances in protein solubilisation for two-dimensional electrophoresis. Electrophoresis. 20 (4-5): 660-663. https://doi.org/10.1002/(SICI)1522-2683(19990101)20:4/5<660::AID-ELPS660>3.0.CO;2-Q [DOI:10.1002/(SICI)1522-2683(19990101)20:4/53.0.CO;2-Q]
11. Hortensteiner, S. and B. Krautler. 2011. Chlorophyll breakdown in higher plants. Biochimica et Biophy. Acta. 1807: 977-988. [DOI:10.1016/j.bbabio.2010.12.007]
12. Hussain Wani, S., N. Brajendra Singh, A. Haribhushan and J. Iqbal Mir. 2013. Compatible solute engineering in plants for abiotic stress tolerance-role of glycine betaine. Cur. Genomics. 14: 157-165. [DOI:10.2174/1389202911314030001]
13. Jafarinia, M. and M. Shariati. 2012. Effects of salt stress on photosystem II of canola plant (Brassica napus L.) probing by chlorophyll a fluorescence measurements. Iran. J. Sci. Tech. A1: 71-76.
14. Joseph, B. and D. Jini. 2010. Proteomic analysis of salinity stress-responsive proteins in plants. Asian J. Plant Sci. 9: 307-313. [DOI:10.3923/ajps.2010.307.313]
15. Kausar, R., M. Arshad, A. Shahzad and S. Komatsu. 2013. Proteomics analysis of sensitive and tolerant barley genotypes under drought stress. Amino Acids. 44: 345-359. [DOI:10.1007/s00726-012-1338-3]
16. Khan, M. A., M. U. Shirazi, M. A. Khan, S. M. Mujtaba, E. Islam, S. Mumtaz, A. Shereen, R. U. Ansari and M. U. Ashraf. 2009. Role of proline, K+/Na+ ratio and chlorophyll content in salt tolerance of wheat. Pak. J. Bot. 41 (2): 633-638.
17. Komatsu, S. and N. Tanaka. 2004. Rice proteome analysis: A step toward functional analysis of the rice genome. Proteomics. 4: 938-949. [DOI:10.1002/pmic.200401040]
18. Koocheki, A. 1994. Crop Production in Dry Region: Cereals, Legumes, Industrial and Forage Crops. Jihad Daneshghahi Mashhad Press. (In Persian).
19. Lu, Z. and P. M. Neumann. 1999. Low cell-wall extensibility can limit maximum leaf growth rates in rice. Crop Sci. 39: 126-130. [DOI:10.2135/cropsci1999.0011183X003900010020x]
20. Ma, B. L., M. J. Morison and H. D. Videng. 1995. Leaf greenness and photosynthetic rates in soybean. Crop Sci. 35: 1411-1414. [DOI:10.2135/cropsci1995.0011183X003500050025x]
21. Michaletti, A., M. R. Naghavi, M. Toorchi, L. Zolla and S. Rinalducci. 2018. Metabolomics and proteomics reveal drought-stress responses of leaf tissues from spring-wheat. Sci. Rep. 8: 1-18. [DOI:10.1038/s41598-018-24012-y]
22. Momeni, N., M. Arvin, Gh. Khajoei nejad, B. Keramat and F. Daneshmand. 2013. Effects of sodium chloride and salicylic acid on some photosynthetic parameters and mineral nutrition in maize (Zea mays L.) plants. Plant Biol. 5 (15): 15-30 (in Persian with English abstract).
23. Nayyar, H. 2003. Accumulation of osmolytes and osmotic adjustment in water-stressed wheat (Triticum aestivum) and maize (Zea mays) as affected by calcium and its antagonists. Environ. Exp. Bot. 50: 253-264. [DOI:10.1016/S0098-8472(03)00038-8]
24. Pandey, M. and S. Penna. 2017. Time course of physiological, biochemical and gene expression changes under short-term salt stress in Brassica juncea L. Crop J. 5 (3): 219-230. [DOI:10.1016/j.cj.2016.08.002]
25. Perkins, D. N., D. J. C. Pappin, D. M. Creasy and J. S. Cottrel. 1999. Probability based protein identification by searching sequences databases using mass spectrometry data. Electrophoresis. 20: 3551-3567. https://doi.org/10.1002/(SICI)1522-2683(19991201)20:18<3551::AID-ELPS3551>3.0.CO;2-2 [DOI:10.1002/(SICI)1522-2683(19991201)20:183.0.CO;2-2]
26. Sairam, R. K., K. V. Rao and G. C. Srivastava. 2002. Differential response of wheat genotypes to long term salinity stress in relation to oxidative stress, antioxidant activity and osmolyte concentration. Plant Sci. 163: 1037-1046. [DOI:10.1016/S0168-9452(02)00278-9]
27. Sharma, R., D. De Vleesschauwer, M. K. Sharma and P. C. Ronald. 2013. Recent advances in dissecting stress-regulatory crosstalk in rice. Mol. Plant. 6: 250-260. [DOI:10.1093/mp/sss147]
28. Tian, F., J. Gong, J. Zhang, M. Zhang, G. Wang, A. Li and W. Wang. 2013. Enhanced stability of thylakoid membrane proteins and ntioxidant competence contribute to drought stress resistance in the tasg1 wheat stay-green mutant. J. Exp. Bot. 64(6): 1509-1520. [DOI:10.1093/jxb/ert004]
29. von Ballmoos, C. and P. Dimroth. 2007. Two distinct proton binding sites in the ATP synthase family. Biochem. 46: 11800-11809. [DOI:10.1021/bi701083v]
30. Wagner, G. J. 1979. Content and vacuole/ extravacuole distribution of neutral sugars, free amino acids and anthocyanin in protoplasts. Plant Physiol. 64: 88-93. [DOI:10.1104/pp.64.1.88]
31. Wehner, G. G., C. C. Balko, M. M. Enders, K. K. Humbeck and F. F. Ordon. 2015. Identification of genomic regions involved in tolerance to drought stress and drought stress induced leaf senescence in juvenile barley. BMC Plant Biol. 15 (1): 125. [DOI:10.1186/s12870-015-0524-3]
32. Zhang, L., S. Xiao, W. Li, W. Feng, J. Li, Z. Wu, X. Gao, F. Liu and M. Shao. 2011. Overexpression of a Harpin-encoding gene hrf1 in rice enhances drought tolerance. J. Exp. Bot. 62 (12): 4229-4238. [DOI:10.1093/jxb/err131]
ارسال پیام به نویسنده مسئول

ارسال نظر درباره این مقاله
نام کاربری یا پست الکترونیک شما:

CAPTCHA


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Khalily M, Naghavi M R. Effect of salinity stress on physiological characteristics and protein profile of tolerant and sensitive barley (Hordeum vulgare L.) cultivars at vegetative growth stage. علوم زراعی. 2020; 22 (1) :32-49
URL: http://agrobreedjournal.ir/article-1-983-fa.html

خلیلی معروف، نقوی محمدرضا. اثر تنش شوری بر ویژگی‌های فیزیولوژیکی و پروفایل پروتئینی ارقام متحمل و حساس جو (.Hordeum vulgare L) در مرحله رشد رویشی. مجله علوم زراعی ایران. 1399; 22 (1) :32-49

URL: http://agrobreedjournal.ir/article-1-983-fa.html



دوره 22، شماره 1 - ( بهار 1399 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله علوم زراعی ایران Iranian Journal of Crop Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.06 seconds with 32 queries by YEKTAWEB 4106